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实验外包—— 一文教你4步搞定流式细胞术!

发布时间:2025-10-06
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作者:东极药物

第一步:设计流式细胞实验流式对照至少有 5 种,包括生物学对照,空白对照,同型对照(Isotype control),补偿对照(也叫单阳性对照)和 FMO 对照,主要目的是为了避免出现的假阳性或假阴性结果。第二步:细胞悬液样···


第一步:设计流式细胞实验

 

流式对照至少有 5 种,包括生物学对照,空白对照,同型对照(Isotype control),补偿对照(也叫单阳性对照)和 FMO 对照,主要目的是为了避免出现的假阳性或假阴性结果。

 

第二步:细胞悬液样本制备

 

流式细胞术的分析检测建立在单个细胞的基础上,所以制备合格的单个分散的细胞悬液是非常关键的一环。

 

流式细胞悬液样本制备步骤:

(1)制备活性高的单细胞悬液:用胰酶消化细胞,PBS 清洗2~3次,主要去除胰酶,然后使用完全培养基将细胞调整为5x10^6-5x10^7个/ml即得待检样本

(2)取40ul细胞悬液加入预先有特异性McAb(5~50ul)的小玻璃管或塑料离心管,再加 50u1:20(用DPBS稀释)灭活正常兔血清,置于4℃ 30min

(3)用洗涤液洗涤2次,每次加洗涤液2ml左右,1000rpm离心5min

(4)弃上清,加入50ul工作浓度的羊(或兔)抗鼠荧光标记物,充分振摇,4℃,30min

(5)用洗涤液洗涤2次,每次加液2ml左右,1000 rpm离心5min

(6)加1ml固定液制成流式细胞仪标本

 

第三步:流式检测操作流程

 

流式细胞仪的使用一般分为仪器前阶段、流式细胞仪阶段和结果分析阶段。

 

(1)仪器前阶段,包括试剂的准备,细胞制备、细胞的荧光染色,其中细胞样本准备操作步骤如下:

 

1. 单细胞悬液的制备:将1x10^5~1x10^7的细胞放入1.5 ml离心管中3000r/min离心5min,弃上清;加入FACS缓冲液100ul悬浮细胞

2. 封闭细胞表面Fc受体:在步骤1中加入Fc受体抗体0.5 ul(0.5mg/ml),水浴3分钟

3. 细胞与荧光抗体结合:在步骤2中加入荧光抗体1ul(0.5mg/ml),水浴30分钟

4. 洗细胞去除游离的荧光抗体:在步骤3中加入FACS缓冲液350ul,轻轻混匀,3000r/min,离心5分钟,弃上清,2次重复步骤4

5. 上样前处理:取100ul仪器缓冲液加入步骤4获得的细胞沉淀中,轻轻混匀悬浮细胞将细胞悬液移入FACS专用管中准备进行仪器检测和分析

 

(2)流式细胞仪阶段,主要是仪器的操作,包括以下步骤:

 

仪器的操作:

 

1. 使用前的准备

①打开电源:包括系统电源和主机部分电源,指示灯变绿

②检查供液槽和废液槽:供液槽应含足够的仪器缓冲液,废液槽应在上次使用后清洗干净

③使机器处于负亚状态,使细胞悬液被吸入至机器的吸管口

 

使用中的操作:

 

1. 计算机部分—使用CellQuest程序系统软件

①设定所要检测细胞的数量:一般设10000~20000个细胞

②命名本次实验:一般含使用者的姓名和实验日期

③打开记数部分:显示进入的细胞数以及检测一定量的细胞所需要的时间

④将微机与主机连接:控制检测时的预检测和实际检测

⑤主机设定:一般是已设定好的适合测定淋巴细胞的条件包括探测器的电压。探测器的电压是调空光电倍增管所能检测荧光密度的范围

⑥选择检测的波长和表达方式(plot):如果用一种荧光抗体一般选直方图(histogram);如果用两种荧光抗体,常选点状二维图(dotplot)或轮廓线图(contourplot)表

 

2. 细胞的吸入:将装有细胞的FACS测定管放置到机器吸管孔处。先预检测样品,然后进行实际检测。可根据细胞的浓度选择测定的速度(低、中或高)。所有的数据将自动存入微机。

 

3. 使用后的清洗:

①将装FACS清洁液的FACS管放置机器吸管孔,高速吸入1min

②将装FACS洗净液的FACS管放置机器吸管孔,高速吸入1min

③再将装FACS清洁液的FACS管放置机器吸管孔,高速吸入5min;再将装FACS洗净液的FACS管放置机器吸管孔,高速吸入5分钟

④同样再将装FACS洗净液的FACS管放置机器吸管孔,高速吸入5min

⑤最后将一装有双蒸水的FACS管放置机器吸管孔后,关闭机器

⑥将废液槽中的废液倒掉,并清洗干净废液槽

 

注意事项:

 

1. 减少非特异荧光染色

细胞的活性和状态:流式细胞仪不但可探测细胞表面的荧光,也可探测细胞内的荧光。因此,如果要检测细胞表面的分子,一定要保证细胞的活性,还应尽可能保持细胞静止,通常在4度进行操作。否则,荧光抗体进入死细胞内,会产生非特异结果。

 

2. 封闭抗体的应用是必不可少的,因为大多数的免疫细胞表面都表达有Fc-R。细胞与抗体相互作用后,一定要用FACS缓冲液洗2~3次,以除去游离的抗体。

 

3. 单染色时以FACS最常用,FITC标记抗体荧光比较稳定而且价格合适。

 

4. 如果同时要检测两种以上的分子,一定要选择不同波长的荧光所标记的抗体。

 

第四步:流式检测结果分析

 

实验结果图通常有一维直方图、二维点图、等高线图、密度图等。由数据还可以做出标准曲线进行定量分析。



文章出自:验外   想了解更多请关注:http://www.dj-cro.com/



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